TARTARUGHE

Preparazione pre-chirurgica dell'ambiente operatorio
La preparazione pre operatoria dei rettili sottoposti a terapia chirurgica presenta pochi problemi o niente. Dopo che il paziente è stato anestetizzato e immobilizzato in modo appropriato, si strofina accuratamente la zona dell'incisione e quella circostante con una sostanza organica, per uso chirurgico, contenente iodio (povidone) (per esempio Betadine Surgical Scrub) per poi risciacquare e pennellare o usare uno spray chirurgico a base di povidone iodio (per esempio Betadine Solution) o una soluzione antisettica simile. Si dovrebbe circoscrivere la zona operatoria con bende sterili, che possono essere tenute in posizione con liquido adesivo sterile se non si possono usare garze pinzettate a causa della natura dell'integumento o del guscio del paziente.

Strumentazione
Per eseguire la chirurgia generale sono necessari pochi strumenti chirurgici specialistici: 1) varie curette dentarie piccole o piccoli specilli a punta arrotondata (anche bastoncini per togliere il cerume), che sono adatti per l'enucleazione del contenuto di ascessi ispessiti (i bastoncini per il cerume sono particolarmente adatti per lavorare nell'orbita o attorno ad essa, poiché strumenti dal bordo rigido potrebbero danneggiare i delicati contenuti orbitali); 2) forbici angolari metalliche da sutura di 12 cm; 3) trapani manuali a rotazione o seghe, che possono essere usati per tagliare il piastrone o il carapace di tartarughe e testuggini. Se non è disponibile uno strumento a rotazione ad alta velocità un piccolo trapano poco costoso per dilettanti, a motore elettrico (come il Dremel Moto-Tool), è un sostituto apprezzabile; esso può essere sterilizzato con ossido di etilene. Lo strumento può essere immesso in una sacca di tela e sterilizzato, così come può essere reso sterile unitamente ai suoi componenti e ai teli chirurgici, onde evitare la contaminazione del campo operativo; 4) vari strumenti atti alla torsione, frese rotatorie e lame per la sega circolare ( meglio se sterilizzate con ossido di etilene per impedire il deterioramento della parte esterna della lama) e 5) cucchiaini di varia forma e lunghezza per togliere calcoli o uova da una incisione.
La maggior parte di forbici, pinze, pinze emostatiche ed aghi da sutura usati per la chirurgia dei mammiferi è adatta anche per le tecniche operatorie sui rettili.

Materiali per la sutura
 materiali da sutura sono gli stessi usati nella chirurgia dei vertebrati superiori: sono stati usati con successo gut cromico, acido poliglicolico (Dexon), poliestere (Dacron, Mersilene, Polydeck, Tycron e altri) e Vetefil.
Il materiale da sutura preferibile è il filo metallico di acciaio inossidabile monofilamento usato con un ago molto robusto; questo materiale eviterà l'abrasione e la tensione meglio di altri materiali. Ciò è particolarmente importante per incisioni ventrali, palmari e plantari che possono venire di frequente a contatto con superfici abrasive.

Anestesia
L'efficacia dell'anestesia nei rettili è legata strettamente al loro particolare metabolismo. I rettili sono ectotermici, almeno per la maggior parte del loro ciclo vitale. A causa di queste proprietà ectotermiche, la maggior parte dei rettili deve cercare posti caldi, onde innalzare la propria temperatura corporea in modo passivo. Si hanno aumenti di metabolismo durante brevi periodi di intensa attività, come quando gli animali catturano e ingeriscono la preda; in ogni altro momento, tuttavia, i rettili hanno tassi metabolici molto bassi.
I rettili sono altamente sensibili alle incisioni cutanee e reagiscono il più vigorosamente possibile alle ferite penetranti; di conseguenza, nei rettili è necessario l'uso dell'anestesia per la maggior parte delle procedure chirurgiche. Gli effetti degli agenti anestetici iniettabili che sono adottati per mammiferi e uccelli sono assolutamente imprevedibili quando sono usati nei rettili, a causa del basso tasso metabolico di questi animali. Ci si dovrebbe chiedere, in modo critico, se un anestetico iniettabile sia assorbito nei rettili in modo abbastanza completo a ogni livello, così da ottenere una concentrazione di anestetico nel sangue sufficiente per produrre l'anestesia voluta. Sembra irrazionale aumentare semplicemente il dosaggio dei farmaci finché non si raggiungono alti livelli, dato che l'effetto finale che si ottiene è solo una sorta di prolungata invalidità del soggetto e non l'anestesia vera e propria.
Nei rettili, si potrebbe probabilmente ottenere un'immobilizzazione efficace, ed una probabile anestesia, con un bagno di acqua gelata a temperatura esattamente controllata; tuttavia, sarebbe ovviamente difficile una monitorizzazione e il mantenimento di livelli anestetici soddisfacenti. Apparentemente la tolleranza all'esposizione al freddo varia nei rettili a seconda della specie, così come avviene nei mammiferi.
Si ritiene che l'anestesia indotta per inalazione tramite un'unità anestetica chiusa abbia delle limitazioni in molti rettili, a causa della loro capacità di trattenere il respiro.
I rettili hanno polmoni a forma di sacco; all'atto della ventilazione, animali di questo tipo inghiottiscono letteralmente l'aria e la trattengono per periodi variabili di tempo. La posizione abituale di stasi della glottide nei rettili è quella di chiusura ed essa viene aperta solo ad intervalli, per respirare. (Questa è una situazione opposta a quella riscontrabile nei mammiferi e negli uccelli, nei quali la posizione abituale dell'orifizio laringeo è di apertura, con chiusura dello stesso solo per la deglutizione).
Ai rettili che possono essere sottoposti ad intubazione endotracheale tramite contenzione manuale, senza l'apporto di pre-anestesia, può essere somministrato con efficacia un anestetico per via inalatoria con l'introduzione meccanica dell'agente nei sacchi polmonari. L'induzione di anestesia con questo sistema è rapida quasi come nei mammiferi. E' stato anestetizzato chirurgicamente con questo metodo ogni rettile, compresi serpenti, lucertole, tartarughe e coccodrilli. La bocca dell'animale viene tenuta aperta, tramite contenzione manuale, con uno speculo adatto allo scopo, senza l'ausilio di pre-anestesia. L'orifizio laringeo da sottoporre ad intubazione è situato alla base della lingua; il tubo endotracheale viene collegato a un ventilatore per anestesia inalatoria, dando quindi inizio ad una pressione positiva di ventilazione dei sacchi polmonari, al ritmo di 4-6 atti respiratori per minuto. Il picco della pressione positiva al termine dell'inspirazione è situato a 12 cm di H2O. Si somministra alotano (Fluothane) alla concentrazione del 4% in ossigeno fino a che l'animale non cessa di dibattersi e il tono muscolare corporeo del rettile comincia a rilassarsi; a questo punto si riduce la concentrazione di alotano fra il 2 e il 3%. Al diminuire dell'effetto dell'anestetico, il tono muscolare riprende, cominciando generalmente dai segmenti posteriori del corpo.
Quando si raggiunge un completo ristabilimento, l'anestetico viene allontanato e si forniscono periodi di pressione positiva intermittente della ventilazione dei sacchi polmonari, al ritmo di uno ogni 3-5 minuti.
L'anestesia chirurgica in ogni forma di rettili è stata mantenuta per tre ore o più arrivando al ristabilimento completo, ottenuto entro otto ore dall'interruzione di somministrazione dell'alotano. E' possibile che le superfici sierose dei sacchi polmonari respiratori rappresentino il luogo più efficace di somministrazione e interruzione dell'anestetico nei rettili, ricorrendo ad una pressione positiva di ventilazione.